高压氧对慢性疲劳综合征大鼠血清卵泡刺激素、黄体生成素的影响

[摘要] 目的 观察高压氧治疗对慢性疲劳综合征(chronic fatigue syndrome,CFS)大鼠卵泡刺激素(follicle stimulating hormone,FSH)、黄体生成素(luteinizing hormone,LH)的影响。 方法 将50只SD大鼠随机分为空白对照组、高压氧对照组、CFS模型组、CFS高压氧组及CFS休息组,每组各10只。采用负重力竭游泳的方法建立CFS动物模型,采用放射免疫法检测血清促性腺激素(FSH、LH)水平。 结果 CFS模型组FSH[(0.104 00±0.049 69)U/L]、LH[(0.153 00±0.050 56)U/L]水平低于空白对照组[(0.248 00±0.089 29)、(0.257 00±0.073 34)U/L],差异均有统计学意义(均P < 0.05);CFS高压氧组FSH[(0.221 00±0.061 73)U/L]、LH[(0.226 00±0.060 59)U/L]水平高于CFS模型组[(0.104 00±0.049 69)、(0.153 00±0.050 56)U/L],差异均有统计学意义(均P < 0.05);CFS高压氧组FSH[(0.221 00±0.061 73)U/L]、LH[(0.226 00±0.060 59)U/L]水平与空白对照组[(0.248 00±0.089 29)、(0.257 00±0.073 34)U/L]比较,差异无统计学意义(P > 0.05)。CFS休息组FSH[(0.137 00±0.041 38)U/L]、LH[(0.134 00±0.041 15)U/L]水平与CFS模型组[(0.104 00±0.049 69)、(0.153 00±0.050 56)U/L]比较,差异无统计学意义(P > 0.05);高压氧对照组FSH[(0.198 00±0.074 06)U/L]、LH[(0.244 00±0.043 26)U/L]与空白对照组[(0.248 00±0.089 29)、(0.257 00±0.073 34)U/L]比较,差异无统计学意义(P > 0.05)。 结论 CFS大鼠FSH、LH水平下降,经高压氧治疗后FSH、LH水平较前明显恢复,正常动物行高压氧治疗对FSH、LH水平无影响。

[关键词] 慢性疲劳综合征;高压氧;卵泡刺激素;黄体生成素;

[中图分类号] R459.6 [文献标识码] A [文章编号] 1673-7210(2013)04(b)-0031-03

慢性疲劳综合征(chronic fatigue syndrome,CFS)是一组以长期极度疲劳为主要表现的全身性综合征,其基本特征为新发生的、持续性或反复发作的虚弱性疲劳,持续时间≥6个月,卧床休息不能缓解,而各项体格检查和实验室检查无明显的异常发现。CFS随着疾病的发展可出现各种并发症,严重影响到患者的工作能力、效率;学历越高的人群,不孕不育的比例越高。本课题组前期通过动物模型的建立,进行了CSF临床表现、相关的实验诊断及治疗手段的研究。结合目前临床上高压氧用于治疗CFS的报道,发现高压氧治疗对于缓解急性运动疲劳有确定的疗效[2]。卵泡刺激素(FSH)、黄体生成素(LH)均由垂体前叶嗜碱性细胞分泌,属于促性腺激素,受下丘脑-垂体-性腺轴(hypothalamic pituitary gonad axis,HPG)调控。在男性,FSH主要作用于曲细精管,调节睾丸的生精过程;LH主要作用于睾丸间质细胞,调节睾酮分泌。在女性,FSH与雌激素共同作用促进卵泡发育;LH是卵泡发育、成熟、排卵不可缺少的调节因素。可见,FSH与LH参与人体生长发育、生殖等诸多环节。本实验通过建立CFS的动物模型,观察CFS大鼠血清促性腺激素(FSH、LH)的变化及高压氧治疗对其的影响,并进一步探讨其临床意义。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 动物 健康雄性SD大鼠50只,清洁级,体重220~250 g,由北京维通利华实验动物中心提供[许可证编号:SCXK(京)200720001]。动物饲养环境:清洁级实验室饲养,温度20~25℃,湿度40%~70%,噪声< 60 dB,工作照明:12 h明+12 h暗。

1.1.2 仪器 大鼠泳缸(本实验室自制);开阔箱(本实验室自制);爬杆架;电子秤;吹风机;单人纯氧舱。

1.2 方法

1.2.1 实验分组 大鼠适应性饲养3 d后(自由进食、饮水,每笼5只进行饲养),随机分为5组,每组10只。各组处理如下:①空白对照组:无任何处理,正常饲养;②高压氧对照组:正常大鼠给予高压氧治疗;③CFS模型组:单纯进行动物造模;④CFS高压氧组:造模成功后给予高压氧治疗;⑤CFS休息组:造模成功后给予休息。

1.2.2 CFS模型制备 将实验组大鼠单笼饲养,在基础进食(每只成年大鼠于静息状态下的采食量,约相当于自身体重的5%)条件下让大鼠力竭游泳,连续游泳训练14 d。具体方法:强迫大鼠在25~27℃水温的游泳缸(60 cm×40 cm×100 cm)中负重游泳,负重量为每只大鼠自身体重的5%,采取每日2次游泳法,前后相差10 min,游泳至力竭为止。然后从水中将大鼠捞出后,热风机将动物皮毛吹干。力竭标准:游泳范围逐渐缩小,动作明显失调、慌张,鼻部在水面上下浮动,头部没入水面下10 s不能上浮为力竭标准。

1.2.3 标本制备及检测 空白对照组、CFS模型组于造模的第14天即实验第14天(造模最后1 d)由腹腔注射水合氯醛全麻,并由心脏取血送交海军总医院检验科采用放射免疫法分别检测FSH、LH水平。CFS高压氧组、CFS休息组及高压氧对照组动物于CFS高压氧组、高压氧对照组高压氧治疗5次后即实验第19天(高压氧治疗最后1 d)腹腔注射水合氯醛全麻,并由心脏取血送交海军总医院检验科采用放射免疫法分别检测FSH、LH水平。

1.3 统计学方法

采用统计软件SPSS 13.0对数据进行分析,正态分布的计量资料以均数±标准差(x±s)表示,多组间比较采用方差分析,两两比较采用LSD-t检验。以P < 0.05为差异有统计学意义。

2 结果

CFS模型组FSH[(0.104 00±0.049 69)U/L]、LH[(0.153 00±0.050 56)U/L]水平低于空白对照组[(0.248 00±0.089 29)、(0.257 00±0.073 34)U/L],差异均有统计学意义(均P < 0.05);CFS高压氧组FSH[(0.221 00±0.061 73)U/L]、LH[(0.226 00±0.060 59)U/L]水平高于CFS模型组[(0.104 00±0.049 69)、(0.153 00±0.050 56)U/L],差异均有统计学意义(均P < 0.05);CFS高压氧组FSH[(0.221 00±0.061 73)U/L]、LH[(0.226 00±0.060 59)U/L]水平与空白对照组[(0.248 00±0.089 29)、(0.257 00±0.073 34)U/L]比较,差异无统计学意义(P > 0.05)。CFS休息组FSH[(0.137 00±0.041 38)U/L]、LH[(0.134 00±0.041 15)U/L]水平与CFS模型组[(0.104 00±0.049 69)、(0.153 00±0.050 56)U/L]比较,差异无统计学意义(P > 0.05);高压氧对照组FSH[(0.198 00±0.074 06)U/L]、LH[(0.244 00±0.043 26)U/L]与空白对照组[(0.248 00±0.089 29)、(0.257 00±0.073 34)U/L]比较,差异无统计学意义(P > 0.05)。见表1。

3 讨论

CFS严重影响患者的工作和生活,越来越得到国内外医学界广泛关注。目前医学界对CFS的病因尚未明确,其致病机制主要有病毒感染学说[3]、免疫功能失调学说[4]、氧化应激学说、遗传因素学说[5]、神经内分泌系统异常等学说[6]。本课题组前期的研究证实,高压氧治疗能够缓解CSF大鼠的疲劳症状,改善功能状态。从本次实验大鼠激素水平的变化可以看出,CFS大鼠促性腺激素(FSH、LH)水平较正常对照组明显下降,高压氧治疗后的两种激素水平有明显回升;而且高压氧对正常情况下大鼠促性腺激素(FSH、LH)水平无明显影响。

目前有证据表明,CFS可出现炎症激活,还能使氧化应激和硝基化应激的增加;出现炎性因子如NFκ-β、COX-2和iNOS等分泌增加,并且其与疾病的严重程度呈显著正相关[7],并随着病情的发展持续存在。在这种慢性应激条件下,作为应激反应引发激素的下丘脑促肾上腺皮质激素释放激素(CRH)分泌过多,过量的CRH进一步导致垂体促肾上腺皮质激素(ACTH)的分泌增多,最终造成糖皮质激素(GCs)分泌过多,过量的GCs使HPG轴的负反馈机制失调,导致下丘脑CRH、垂体ACTH、肾上腺GCs持续升高,表现为HPG轴功能持续亢进[8],大量释放的促肾上腺皮质激素释放因子(CRF)和GCs均可在下丘脑、垂体、性腺(睾丸或卵巢)多水平抑制HPG轴功能[9-10],使促性腺激素水平分泌下降。从而使激素水平下降,不能刺激性腺的发育,导致性激素分泌减少,临床上表现出一系列性腺功能减退征,如少精弱精子或排卵障碍等表现,均是导致原发性不孕的主要常见病因[11]。近年来相关报道逐渐增多,呈上升的趋势,社会问题突出。目前临床治疗上主要以替代激素治疗为主,部分临床患者需要长期、甚至终身维持治疗。

高压氧能增加椎动脉血流,兴奋网状结构,刺激下丘脑-垂体[12],能抑制HPG轴相关激素的过度分泌,以纠正CFS异常的HPG轴功能,减少CRF及GCs的释放,减轻对HPG轴的抑制作用,从而调节机体HPG轴的功能恢复,促进FSH、LH激素水平的恢复。高压氧能提高机体血氧分压、增加血氧含量,使身体的多种酶活性增强,机体产能增加,全身细胞代谢活跃,有助于身体各器官功能的恢复,各项激素水平进入合理释放,达到新的平衡。同时,高压氧能抑制细胞因子的产生[13],对免疫功能存在双向调节效应[14],从而纠正免疫系统功能的紊乱,降低免疫细胞的反应性,减少特殊抗体的产生,从而改善症状,使促性腺激素(FSH、LH)水平恢复正常。

从本实验结果可以看出,慢性疲劳对于大鼠FSH、LH水平有明显影响,可以出现FSH、LH水平下降的表现;而积极有效的高压氧治疗可以使大鼠促性腺激素水平逐渐恢复,且常规高压氧治疗对正常大鼠FSH、LH水平无影响。CFS是否是导致不孕不育的病因之一,仍需要进一步的实验及临床证据。但对于患有该病的患者来说,高压氧有可能成为治疗该疾病的一种方法,而且无创、经济、副作用小。

[参考文献]

[1] 高怀林,吴以岭,朱慧明,等.慢性疲劳综合征动物模型的建立及对血管内皮功能的影响[J].中国中医基础医学杂志,2009,15(12):904-906,919.

[2] 廖晃怡,黄怀,孙丹霞,肖利华.高压氧治疗慢性疲劳综合征的疗效观察[J].重庆医学,2010,39(8):941-942.

[3] Puri BK. Long-chain polyunsaturated fatty acids and the pathophysiology of myalgic encephalomyelitis(chronic fatigue syndrome)[J]. J Clin Pathol,2007,60(2):122-124.

[4] Lorusso L,Mikhaylova SV,Capelli E,et al. Immunological aspects of chronic fatigue syndrome [J]. Autoimmun Rev,2009,8(4):287-291.

[5] 张拥波,胡松,刘占东.慢性疲劳综合征的发病机制[J].国际神经病学神经外科学杂志,2010,37(1):84-87.

[6] Katafuchi T,Kondo T,Take S,et al. Brain cytokines and the 5-HT system during poly Ⅰ:C-induced fatigue [J]. Ann N Y Acad Sci,2006,1088:230-237.

[7] Maes M ,Mihaylova I,Kubera M,et al. Not in the mind but in the cell: increased production of cyclo-oxygenase-2 and inducible NO synthase in chronic fatigue syndrome [J]. Neuro Endocrinol Lett,2007,28(4):463-469.

[8] 吕杭州,吕明庄.艾灸疗法对慢性疲劳鼠行为学变化及下丘脑-垂体-肾上腺皮质轴相关激素的影响[J].安徽中医学院学报,2009,28(6):43-46.

[9] Kraemer WJ,Fleck SJ,Dziados JE,et al. Changes in hormonal concentrations after different heavy-resistance exercise protocols in women [J]. Int J Sports Med,1993,75(2):594-604.

[10] Urhancen A,Gabriel H,Kindermann W. Blood hormones as markers of training stress and overtraining [J]. Sports Med,1995,20(4):251-276.

[11] 黄伟玲.325例不孕不育症原因分析[J].吉林医学,2011,32(36):7749-7750.

[12] 李宁,黄怀.高压氧临床治疗学[M].北京:中国协和医科大学出版社,2007:38.

[13] 李长春,孙学军,杭荣椿,等.高压氧预处理对体外大鼠脑小胶质细胞产生细胞因子的影响[J].中国临床康复,2005,9(37):158-159.

[14] 徐伟刚,陶恒沂,蒋春雷.高气压对免疫机能的影响[J].中华航海医学与高气压医学杂志,2004,11(3):191-192.

(收稿日期:2012-12-07 本文编辑:李继翔)